Organogénesis durante el periodo larval en peces.

Autores/as

  • I. Zavala-Leal
  • S. Dumas-Lapage
  • R. Peña-Martinez

DOI:

https://doi.org/10.37543/oceanides.v26i2.100

Palabras clave:

Desarrollo ontogénico, ontogenia indirecta, periodo larval, teleósteos, organogénesis

Resumen

La presencia de un periodo larval caracteriza a los peces con ontogenia indirecta. Este periodo de desarrollo implica una serie de transformaciones encaminadas a la adquisición de las características
biológicas y ecológicas propias de la especie; y en muchos casos culmina con cambios de distribución y hábitos alimenticios. El periodo larval incluye cuatro estadios de desarrollo: larva vitelina, larva pre-flexión, larva flexión y larva post-flexión. Cada estadio de desarrollo presenta características asociados a cambios en las diferentes prioridades durante el crecimiento. De esta forma, durante los estadios de larva vitelina y larva pre-flexión, la
prioridad es incrementar las posibilidades de supervivencia a través de enfatizar la capacidad alimenticia y de evasión de depredadores, lo cual se ve reflejado en una mayor diferenciación de estructuras asociadas a estas funciones. La larva flexión se caracteriza por presentar un mayor grado de funcionalidad de los órganos y estructuras desarrolladas anteriormente. Finalmente, durante el estadio de larva post-flexión se presentan los cambios más agudos con respecto a la funcionalidad de los órganos ya desarrollados. En el presente trabajo se realiza la descripción del desarrollo de estos órganos para cada uno de los estadios de desarrollo larval, haciendo referencia en las diferencias y semejanzas entre distintas especies de importancia comercial.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Ávila, E.M. & J.V. Juario. 1987. Yolk and oil globule utilization and developmental morphology of the digestive tract epithelium in larval rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). Aquaculture, 65: 319-331.

Baglole, C.J., C.P. Goff & G.M. Write. 1998. Distribution and ontogeny of digestive enzymes in larval yellowtail and winter flounder. J. Fish Biol., 53: 767-784.

Bailey, K. & E.D. Houde. 1989. Predation on eggs and larvae of marine fish and the recruitment problem. Adv. Mar. Biol., 25: 1-83.

Balon, E.K. 1975. Terminology of intervals in fish development. J. Fish. Res. Bd. Can., 32: 1663-1670.

Balon, E.K. 1984. Reflection on some decisive events in the early life. Trans. Am. Fish. Soc. 113: 178-185.

Bisbal, G.A. & D.A. Bengtson. 1995. Development of digestive tract in larval summer flounder. J. Fish Biol., 47: 277-291.

Blaxter J.H.S. 1986. Development of sense organs and behavior of teleost larvae with special reference to feeding and predator avoidance. Trans. Amer. Fish. Soc., 115: 98-114.

Boulhic, M. & J. Gabaudan. 1992. Histological study of the organogenesis of the digestive system and swim bladder of the Dover sole, Solea solea (Linnaeus 1758). Aquaculture, 102: 373-396. https://doi.org/10.1016/0044-8486(92)90190-V

Calzada-Bosh. A. 1996. Desarrollo postembrionario del intestino y órganos asociados de la dorada, Sparus aurata L., en cultivo. Estudio histológico y ultraestructural. Tesis doctoral. Universidad de Cadiz. 258 p.

Diaz, J.P., M. Prie-Granie, M. Kentouri, S. Varsamos & R. Connnes. 2003. Development of the lateral line system in the sea bass. J. Fish Biol., 62: 24-40.

Eckert, R., D. Randall & G. Augustine. 1990. Fisiología Animal. Mecanismos y Adaptaciones. Interamericana-McGraw-Hill. Madrid. 683 p.

Falk-Petersen, I. B. 2005. Comparative organ differentiation during early life stages of marine fish. Fish Shellf. Immunol., 19: 397- 412.

Gisbert, E., R.H. Piedrahita & D.E. Conklin. 2004. Ontogenetic development of digestive system in California halibut (Paralichthys californicus) with notes on feeding practices. Aquaculture, 232: 455-470.

Hachero-Cruzado, I., J.B. Ortiz-Delgado, B. Borrega, M. Herrera, J.I. Navas & C. Sarasquete. 2009. Larval organogenesis of flatfish brill Scophthalmus rhombus L: Histological and histochemical aspects. Aquaculture, 286: 138-149. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.09.039

Hamlin, H.J., I. Hunt von Herbing & L.J. Kling. 2000. Histological and morphological evaluations of the digestive tract and associated organs of haddock throughout post-hatching ontogeny. J. Fish Biol., 57: 716-732.

Hunt von Herbing, I., T. Miyake, R.G. Boutilier & B.K. Hall. 1992. The coupling of feeding and respiration in developing Atlantic cod Gadus morhua: implications for feeding and survival. Am. Zool. 31, (abstr. 5).

Hunt von Herbing, I., T. Miyake, B. K. Hall & R.G. Boutilier. 1996. Ontogeny of feeding and respiration in larval Atlantic cod Gadus morhua (Teleostei, Gadiformes) : I. Morphology. J. Morph., 227:15-35. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-4687(199601)227:1<15::AID-JMOR2>3.0.CO;2-O

Kawamura, G. & T. Tamura. 1973. Morphological studies on the retina of two teleosts Scomber tapeinocephalus and Halichoeres poecilopterus. Nippon Suisan Gakkaishi, 39: 715-726.

Kawamura, G., R. Tsuda, H. Kumai & S. Ohashi. 1984. The visual cell morphology of Pagrus major and its adaptive changes with shift from pelagic to benthic habitats. Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 50: 1975-1980.

Kawamura, G., S. Masuma, N. Tezuka, M. Koiso, T. Jimbo & K. Namba. 2003. Morphogenesis of sense organs in the bluefin tuna Thunnus orientalis. 123-135. En: Browman, H. I. & A. B. Skiftesvik. (Eds.), The Big Fish Bang. Institute of Marine Research, Bergen, Norway. 465p.

Kendall, Jr.A.W., E.H. Ahlstrom & H.G. Moser. 1984. Early life history stages of fishes and their characters. 11-23. En: Moser, H.G. (Ed.). Ontogeny and systematics of fishes. American Society of Ichthyology and herpetology. Allens Press Inc., Lawrence, Kansas.

Kjørsvik, E., T. van der Meeren, H. Kryvi, J. Arnfinnsson & P. Kvenseth. 1991. Early development of the digestive tract of cod larvae (Gadua morhua L) during star-feeding and starvation. J. Fish Biol., 38: 1-15.

Koumoudouros, G., P. Divanach & M. Kentouri. 1999. Ontogeny and allometric plasticity of Dentex dentex (Osteichthyes: Sparidae) in rearing conditions. Mar. Biol., 135: 561-572.

Kurtz, F. W. & Y. Matsuura. 2001. Food and feeding ecology of Brazilian sardine (Sardinella brasiliensis) larvae from the South easterns Brazilian Bight. Rev. Bras. Oceanogr., 49 (1/2): 61-74.

Kvenseth, A. M., K. Pittman & J.V. Helvik. 1996. Eye development in the Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus): differentiation and development of the retina from early yolk-sac stages through metamorphosis. Can. J. Fish. Aqua. Sci., 53: 2524-2532.

Machinandiarena, L., M. Muller & A. López. 2003. Early life stages of development of the red porgy Pagrus pagrus (Pisces, Sparidae) in captivity, Argentina. Invest. Mar. Valparaíso, 31 (1): 5-13.

Mani-Ponset L., E.Guyot, J.P. Diaz & R. Connes. 1996. Utilization of yolk reserves during post-embryonic development in three teleostean species: the sea bream Sparus aurata, the sea bass Dicentrarchus labrax, and the pike-perch Stizostedion lucioperca. Mar. Biol., 126: 539-547. https://doi.org/10.1007/BF00354636

Matsuoka, M. 2001. Development of sense organs in the Japanese sardine Sardinops melanostictus. Fish. Sci., 67: 1036-1045.

Moorman, S. J. 2001. Development of sensory systems in zebrafish (Danio rerio). ILAR Journal, 42(4): 292-298. https://doi.org/10.1093/ilar.42.4.292

Morrison, M. 1993. Histology of the Atlantic cod, Gadus morhua: an atlas. Part 4. Eleutheroembryo and larva. Canadian Special Publication of Fisheries and Aquatic Sciences No. 119, 496 p.

Mukai, Y. 2006. Role of free neuromastos in larval feeding of willow shiner Gnathopogon elongatus caerulescens Teleosti, Cyprinidae. Fish. Sci., 72: 705-709.

Omura,Y., K. Uematsu, H. Tachiki, K. Furukawa & H. Satoh. 1997. Cone cells appear also in the retina of eel larvae. Fish. Sci., 63: 1052- 1053.

Osse, J.W. & J.G.M. van den Boogaart. 1995. Fish larvae, development, allometric growth, and the aquatic environment. Int. Council Exp. Sea. Mar. Sci. Symp. 201: 21- 34.

Peña, R. & S. Dumas. 2007. Desarrollo de la retina en larvas de la cabrilla arenera Paralabrax maculatofasciatus (Percoidei: Serranidae) bajo condiciones de cultivo. Ciencias Marinas, 33: 293-300.

Peña, R., S. Dumas, M. Villalejo-Fuerte & J.L. Ortiz-Galindo. 2003. Ontogenetic development of the digestive tract in reared spotted sand bass Paralabrax maculatofasciatus larvae. Aquaculture, 219: 633-644.

Porter, S.M. & G.H. Theilacker. 1999. The development of the digestive tract and eye in larval walleye Pollock, Theragra chalcogramma. Fish. Bull., 97: 722-729.

Ribeiro, L., J.L. Zambonino-Infante, C. Cahu & M.T. Dinis. 1999. Development of digestive enzymes in larvae of Solea senegalensis, Kaup 1858. Aquaculture, 179: 465-473.

Rombough, P. J. 1988. Respiratory gas exchange, aerobic metabolism, and effects of hypoxia during early life. 57-159. En W.S. Hoar, D.J. Randall & J.R. Brett (Eds.): Fish Physiology XI a. San Diego: Academic Press. 509p.

Roo, F.J, J. Socorro, M.S. Izquierdo, M.J. Caballero, C.M. Hernández-Cruz, A. Fernández & H. Fernández-Palacios. 1999. Development of red porgy Pagrus pagrus visual system in relation to change in the digestive tract and larval feeding habits. Aquaculture, 179: 499-512. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00183-0

Sala, R., C.A. Santamaría & S. Crespo. 2005. Growth of organ systems of Dentex dentex (L) and Psetta maxima (L) during larval development. J. Fish Biol., 66: 315-326.

Sandy, J.M. & J.H.S Blaxter. 1980. A study of retinal development in larval herring and sole. J. Mar. Biol. Ass. U.K., 60: 59-71.

Santamaría, C.A., M. Marín de Mateo, R. Traveset, R. Sala, A. Grau, E. Pastor, C. Sarasquete & S. Crespo. 2004. Larval organogenesis in common dentex Dentex dentex L. (Sparidae): histological and histochemical aspects. Aquaculture, 237: 207-228. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(04)00174-7 https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.03.020

Sorensen, P. W. & J. Caprio. 1998. Chemoreception. 375-405. En: Evans, D.H, (Ed.) The Physiology of Fishes. CRC Press LLC, New York.

Varsamos, S., R. Connes, J.P. Diaz, G. Barnabé & G. Charmantier. 2001. Ontogeny of osmoregulation in the European sea bass Dicentrarchus labrax L. Mar. Biol., 138: 909-915.

Yúfera, M. & M.J. Darias. 2007. The onset of exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture, 268: 53-63.

Zavala, I. 2007. Efecto de la temperatura, intensidad de luz, tipo y densidad de presa en la eficiencia alimenticia durante la ontogenia inicial del huachinango del Pacífico (Lutjanus peru). Tesis de maestría. CICIMAR-IPN. 52p.

Descargas

Publicado

2011-12-04

Cómo citar

Zavala-Leal, I., Dumas-Lapage, S., & Peña-Martinez, R. (2011). Organogénesis durante el periodo larval en peces. CICIMAR Oceánides, 26(2), 19–30. https://doi.org/10.37543/oceanides.v26i2.100

Número

Sección

Artículos